Poliartritis por Mycoplasma mycoides en cabritos de la isla de  Gran Canaria

Ana S.Ramírez (1), Patricia Assunçao (1), Christian de la Fe   (1),  Javier Sarradell (2) y José B. Poveda (1).

(1): Unidad de Epidemiología y Medicina Preventiva, Dep. de Patología.  Animal, Fac. de Veterinaria, U.L.P.G.C., España. Universidad de Las Palmas de Gran Canaria. Facultad de Veterinaria. Trasmontaña s/n. 35416 - ARUCAS - Gran Canaria (España). Email de contacto: davidc@cicei.ulpgc.es

(2): Patología General, Fac. de Ciencias Veterinarias, Universidad Nacional de Rosario, Argentina.

RESUMEN:

Se estudió un brote de poliartritis en cabritos, en un rebaño de 700 cabezas de la Agrupación Caprina Canaria, en la Isla de Gran Canaria. Los cabritos presentaron trastornos respiratorios y poliartritis. La morbilidad, alcanzó el 100% de los cabritos, mientras que la mortalidad llegó a alcanzar valores superiores al 50%. Mycoplasma mycoides subespecie mycoides tipo large colony (LC) se aisló como agente causal. Su identificación se realizó mediante técnicas bioquímicas y serológicas. Este microorganismo ha sido aislado en numerosos países y representa una de las más importantes causas de enfermedades en cabras de Estados Unidos, Francia, India e Israel. En España, su presencia ya ha sido confirmada por diversos autores. Con este trabajo, queda patente la enorme importancia de este microorganismo en los procesos patológicos del ganado caprino de nuestro país, permitiéndonos comprender su importancia económica y social, a la vez que instruye a los lectores en los procedimientos básicos que se utilizan para el correcto aislamiento e identificación de estos agentes patógenos.

 

PALABRAS CLAVE:

Mycoplasma, mycoides, poliartritis, caprino, aislamiento.

 

INTRODUCCION:

Los micoplasmas son los procariotas más pequeños que se conocen con replicación autónoma. Este grupo de bacterias carecen de pared celular, característica que justifica que se encuentren clasificados en una clase aparte, la clase Mollicutes. Los micoplasmas son parásitos y han sido aislados tanto en humanos, animales, como en plantas e insectos. Los micoplasmas patógenos de animales presentan una pronunciada afinidad por ciertos tejidos u órganos, como el sistema respiratorio, el tracto urogenital, glándulas mamarias y membranas serosas. Una característica muy importante de estos microorganismos es su alta especificidad por el hospedador. A pesar de presentar diferentes mecanismos de patogenicidad (adhesión, cápsula de galactano, producción de peróxido de hidrógeno y radicales libres...), los micoplasmas no se consideran altamente patógenos. Suelen provocar enfermedades subagudas y crónicas, siendo muy importantes los portadores sanos en su epidemiología. (Nicolet, 1996).

La transmisión se realiza a través del contacto directo, fòmites, ruta aérea, la leche y el tracto genital. La intensidad de los síntomas y la propagación de la infección depende de la patogenicidad de las especies de mycoplasmas y de los factores predisponentes (Nicolet, 1996). East y cols. (1983) sugirieron que la infección natural por M. m. m. (LC) es transmitida a los cabritos a partir de las madres, a través del calostro o la leche. Además, también ha sido demostrada la posibilidad de transmisión vertical.

Las especies de mycoplasmas que más comúnmente afectan a la cabra son las siguientes:

M.capricolum subsp. capripneumoniae - Pleuroneumonía contagiosa caprina.

M.ovipneumoniae - Neumonías.

M. agalactiae - Síndrome de agalaxia contagiosa.

M.mycoides subsp. mycoides (LC) - Síndrome de agalaxia contagiosa.

M.mycoides subsp. capri - Neumonías.

M.capricolum subsp. capricolum - Síndrome de agalaxia contagiosa.

Aunque Mycoplasma agalactiae ha sido considerado como el agente responsable del síndrome de agalaxia contagiosa, Mycoplasma mycoides subsp. mycoides (LC) y M. capricolum subsp. capricolum, también participan en la etiología de esta afección sobretodo en el ganado caprino. Esta enfermedad se caracteriza por la tríada clínica de queratoconjuntivitis, artritis y mamitis. Sin embargo, tanto M.m.m. (LC) como M. capricolum subsp. capricolum pueden tener un pronunciado neumotropismo (Lefevre y col., 1987).

La infección por Mycoplasma mycoides subsp. mycoides (LC) en cabras está bien documentada y se caracteriza por la producción de mamitis o neumonía o pleuroneumonía, mientras que en cabritos produce poliartritis, septicemia y una alta mortalidad (Bar-Moshe y col., 1994, Jones y Wood, 1988).

 

MATERIAL Y MÉTODOS:

El estudio se realizó en un rebaño de 700 cabras de la A.C.C. (Agrupación Caprina Canaria) en régimen intensivo, situado en San Nicolás de Tolentino, municipio de la isla de Gran Canaria.

Un gran porcentaje de los animales de la explotación presentaron problemas respiratorios, los animales jóvenes manifestaron además, problemas articulares y queratoconjuntivitis, con un alto índice de mortalidad entre los mismos (más de un 50 %). No se produjeron abortos en la explotación.

FOTO 1: Cabrito con poliartritis

1. Obtención de muestras:

a) De animales vivos (15 muestras): -torundas de oido

-líquido sinovial

b) De 2 animales sacrificados: -pulmón

 

Dichas muestras se recogieron en condiciones de asepsia.

1. Procesamiento de las muestras:

Las muestras se sembraron en medio de cultivo líquido especial para micoplasmas, el medio pH (Kirchhoff y Rosengarten, 1984). La incubación se realizó a 37ºC durante 24 a 72 horas. Una ligera turbidez en medio líquido es típica del crecimiento de micoplasmas, mientras que en medio sólido las colonias adoptan la típica forma de huevo frito.

2. Aislamientos y pruebas preliminares de identificación:

El primer paso consistió en el clonaje sucesivo durante al menos tres veces para la obtención de cultivos puros. Posteriormente se realizaron las pruebas de reversibilidad en Columbia sangre, para eliminar la posibilidad de trabajar erróneamente con formas L. Para conocer cuántas especies de micoplasmas estaban implicados en el brote, se obtuvieron diferentes clones, a los cuales se les realizó la prueba de la sensibilidad a la digitonina para conocer los requerimientos de esteroles.

3. Pruebas bioquímicas:

Con todos los clones obtenidos se realizaron las siguientes pruebas: Fermentación de la glucosa y la manosa, hidrólisis de la arginina, reducción del trifenil-tetrazolium y la producción de películas y cristales (Poveda, 1998).

4. Pruebas serológicas:

El estudio serológico de los clones se llevó a cabo después de realizadas las pruebas bioquímicas. La técnica de identificación serológica empleada fue la inhibición del metabolismo (Poveda y Nicholas, 1998).

5- Histología:

Se tomaron muestras en fresco de tejido pulmonar que posteriormente fueron fijadas en formol al 10% e incluidas en parafina. Se realizaron varios cortes histológicos, y se observaron a microscopio óptico mediante tinción rutinaria con Hematoxilina-Eosina.

FOTO 2A: Corte histológico de pulmón (10X)

FOTO 2B: Corte histológico de pulmón (40X)

 

RESULTADOS:

Se obtuvo aislamiento de todas las muestras, de las cuales seleccionamos cinco clones para su identificación. Todas las colonias, de gran tamaño, presentaron morfología de huevo frito y resultaron sensibles a la digitonina. Los resultados de las pruebas bioquímicas se muestran en la tabla 1.

TABLA 1

Cepa	Glucosa	Manosa	Tetrazolium	Arginina	Urea	Películas y cristales
Clon 1	+	+	+	-	-	-
Clon 2	+	+	+	-	-	-
Clon 3	+	+	+	-	-	-
Clon 4	+	+	+	-	-	-
Clon 5	+	+	+	-	-	-

Los resultados anteriores reducen las posibilidades de la identificación a M.m.m. (LC) y M. m. capri. Estos dos tipos de micoplasmas se pueden diferenciar mediante la prueba de inhibición de metabolismo. El resultado fue el siguiente:

TABLA 2

Cepas	Inhibición de metabolismo
Clon 1	M. m. m. (LC)
Clon 2	M. m. m. (LC)
Clon 3	M. m. m. (LC)
Clon 4	M. m. m. (LC)
Clon 5	M. m. m. (LC)

FOTO 3: Colonias de M.m.m. (LC)

DISCUSIÓN:

La cabra canaria se caracteriza sobre todo por su buena producción lechera, utilizada básicamente en la elaboración de quesos. Hoy en día la producción caprina canaria representa un 60 % de la producción total ganadera. Morfológicamente podemos distinguir tres tipos de cabras dentro de la Agrupación Caprina Canaria (ACC): majorera, palmera y tinerfeña.

Debemos destacar la situación privilegiada que disfruta sanitariamente la A.C.C. respecto a enfermedades como brucelosis, fiebre aftosa, paratuberculosis, artritis-encefalitis caprina... (Capote y col. 1992) siendo actualmente uno de los problemas más graves, las micoplasmosis caprinas.

El principal factor favorecedor de las micoplasmosis es la mezcla de animales de diferentes orígenes (Nicolet, 1996), práctica muy habitual en las Islas Canarias (Capote y col. 1992).

 

FOTO 4: Rebaño de Agrupación Caprina Canaria.

Este caso clínico aquí presentado, es fiel exponente de la situación actual que estamos observando en la isla de Gran Canaria. En un alto porcentaje de los rebaños que tienen problemas de micoplasmas, se aísla M.m.m. (LC) como agente causal de los cuadros patológicos.

Mycoplasma mycoides subsp. mycoides (LC) es un importante patógeno del ganado caprino, causando poliartritis asociada con septicemia, enfermedad sumamente fatal en cabras mayores de 6 meses (Nayak y Bhowmik, 1988).

Es difícil o incluso imposible estimar las pérdidas causadas por los micoplasmas, ya que en general están asociados a otros agentes infecciosos. La terapia antibacteriana, puede proporcionar una mejora temporal en el cuadro clínico, pero no es capaz de eliminar la infección de una granja. (Nicolet, OIE, 1994)

Las mermas económicas que acarrea esta enfermedad en nuestra isla, están siendo tan importantes, que cada vez, adquieren más trascendencia social, hecho normal en una región donde la producción quesera es fundamental. Todo ello, va despertando cada vez más el interés de las instituciones públicas, cuyo objetivo es el control y posterior erradicación de este grave afección de nuestra ganadería.

 

BIBLIOGRAFÍA:

1. Bar-Moshe, B., Rapaport, E. and Brenner, J. 1984. Vaccination trials against Mycoplasma mycoides subsp. mycoides (Large-Colony-Type) infection in goats. Isr. J. of Med. Sci. Vol. 20: 972-974.
2. Capote, J.F., Darmanin, N., Delgado, J.V., Fresno, M. and López, J.L. 1992. Agrupación Caprina Canaria (A.C.C.). Consejería de Agricultura y Pesca del Gobierno de Canarias.
3. East, N.E., DaMassa, J.A., Logan, L.L., Brooks, D.L. and McGowan, B. 1983. Milkborne outbreak of Mycoplasma mycoides subspecies mycoides infection in a commercial goat dairy. JAVMA. Vol. 182 (12): 1338-1341.
4. Jones, G.E., Wood, A.R. 1988. Microbiological and serological studies on caprine pneumonias in Oman. Research in Veterinary Science. 44: 125-131.
5. Kirchhoff, H. and Rosengarten, R. 1984. Isolation of a motile mycoplasma from fish. J. Gen. Microbiol. 130: 2439-2445.
6. Lefèvre, P.C., Jones, G.E. and Ojo, M.O. 1987. Pulmonary mycoplasmoses of small ruminants. Rev. Sci. Tech. Off. Int. Epiz. 6 (3): 759-799.
7. Nayak, N.C. and Bhowmik, M.K. 1988. Mycoplasmal polyarthritis associated with septicaemia in kids: Clinicohaematological and biochemical studies. Indian. J Vet. Path. 12: 13-17.
8. Nicolet, J. 1994. Mycoplasma infections in cattle, sheep and goats: methods for diagnosis and prophylaxis. 62^nd General Session (Office International des Epizooties).
9. Nicolet, J. 1996. Animal mycoplasmoses: a general introduction. Rev. Sci. Tech. Off. Int. Epiz. 15 (4): 1233-1240.
10. Poveda, J.B. 1998. Biochemical characteristics in Mycoplasma identification. In: Methods in Molecular Biology. Vol. 104: Mycoplasma Protocols, Miles and Nicholas (eds.). Humana press Inc., Totowa, NJ, pp. 69-78.
11. Poveda, J.B. and Nicholas, R. 1998. Serological identification of mycoplasmas by growth and metabolic inhibition tests. In: Methods in Molecular Biology. Vol. 104: Mycoplasma Protocols, Miles and Nicholas (eds.). Humana press Inc., Totowa, NJ, pp. 105-111.

 

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